Большая Советская Энциклопедия (ЦИ)

Цитото'ми'я (от цито... и греч. tome) — разрез, рассечение), цитокинез, разделение тела растительной или животной клетки; обычно Ц. завершает митоз . Плоскость деления всегда проходит поперёк веретена деления клетки , посередине между полюсами. Растительные клетки, обладающие плотной стенкой, разделяются путём образования клеточной перегородки, которая, сливаясь с боковыми стенками материнской клетки, расчленяет её на две дочерние (см. Фрагмопласт ). В животных клетках Ц. осуществляется образованием перетяжки — борозды деления. Она образуется на периферии клетки и, углубляясь, постепенно разделяет цитоплазму на две части. Образование борозды связывают главным образом с изменениями поверхностного, или кортикального, слоя клетки. В разделении клеточного тела, вероятно, принимают участие митотический аппарат (определяет плоскость возникновения борозды) и хромосомы (в отсутствие их замедляется темп Ц., образуются неполные борозды). Полагают, что действие обеих этих структур на Ц. не прямое и происходит лишь на ранних стадиях деления. Не исключено, что хромосомы выделяют какие-то химические вещества, влияющие на свойства кортикального слоя. Отсутствие Ц. на заключительной стадии митоза (в телофазе) довольно частое явление, приводящее к возникновению двуядерных клеток.

  М. Е. Аспиз.

Цитофотометрия

Цитофотоме'трия (от цито... , фото... и ...метрия ), один из методов количественной цитохимии , позволяющий определять химический состав клеток в гистологическом препарате по поглощению света клетками. Через препарат пропускают монохроматическое излучение (свет) в виде пучка, диаметр которого соизмерим с диаметром клетки или внутриклеточной структуры. Концентрацию (С) исследуемого вещества в клетке находят по Бугера — Ламберта — Вера закону : Ф = Ф₀ ×е^{- kch} , где Ф — интенсивность света после его прохождения через клетку; Ф₀ — интенсивность падающего на клетку света; k — удельный монохроматического поглощения показатель исследуемого вещества (рассчитанный на единицу его концентрации) при данной длине волны света; h — длина пути, проходимого светом в клетке (практически — толщина гистологического препарата). Найдя концентрацию вещества внутри клетки и измерив её объём, можно рассчитать общее количество этого вещества в клетке. Ц. разработана шведским гистологом Т. Касперсоном в 1936. Чувствительность метода порядка 10^-12 г. Точность Ц. снижается из-за ошибки измерения вследствие неравномерности распределения вещества внутри клетки; для предотвращения этой ошибки используют т. н. сканирующую, или Ц. при двух разных длинах волн излучения. Ультрафиолетовая (УФ) Ц. позволяет определять в неокрашенных препаратах количество нуклеотидов, нуклеиновых кислот, белков по естественному поглощению ими УФ-лучей. Шире распространена Ц. в видимой области спектра; при этом используют естественную окраску отдельных веществ или чаще искусственное окрашивание препаратов специфическими гистохимическими красителями, связывающимися с химическими компонентами клетки в определённых количествах. С помощью большинства красителей выявляют в клетке нуклеиновые кислоты, белки и их отдельные реактивные группы, а также определяют активность ряда ферментов.

  Лит.: Бродский В. Я., Трофика клетки, М., 1966; Введение в количественную цитохимию, пер. с англ., М., 1969; Gaspersson Т., Cell growth and cell function, N. Y., 1950.

  Л. З. Певзнер.

Цитохалазины

Цитохалази'ны (от цито... и греч. chálasis — расслабленность), группа родственных антибиотиков, продуцируемых различными несовершенными грибами .

R₁ , R₂ — различные радикалы

Выделены в 1967 английскими исследователями (С. Б. Картер с сотрудниками). Установлено существование Ц. А, В, С, D, Е и F, различающихся боковыми группами R₁ и R₂ . Ц. — кристаллические соединения с молекулярной массой от 477 до 507 и t_пл от 182 до 270°С; нерастворимы в воде, хорошо растворяются в органических растворителях. В низких концентрациях (1 мкг/мл ) Ц. задерживают образование внутриклеточной перегородки после завершения расхождения хромосом в процессе клеточного деления — митоза , что приводит к образованию многоядерных клеток. В концентрации 10 мкг/мл вызывают выход ядра из клетки — энуклеацию. Способны останавливать эндоцитоз у макрофагов . Действие Ц. обратимо: при их удалении восстанавливается эндоцитоз: ядро, вышедшее из клетки, но не потерявшее с ним связи через цитоплазматический мостик, входит обратно внутрь клетки. Полагают, что Ц. действуют на элементы сократительной системы клетки — микрофиламенты. Используются для цитофизиологических исследований.

  Лит.: Carter S. В., Effects of cytochalasins on mammalian cells, «Nature», 1967, v. 213, № 5073; его же, The cytochalasins as research tools in cytology, «Endeavour», 1972, v. 31, № 113.

  А. Д. Морозкин.